流式细胞表面染色步骤
此为流式细胞表面染色步骤,用于细胞表面抗原染色实验过程参考,具体包括样本准备、细胞计数、设置实验分组、封闭Fc受体、细胞染色等操作步骤。

一、样本准备

详见流式细胞术样本制备技术

1. 收集细胞,200目筛网过滤,收集滤液,300 g离心5 min,弃上清

2. 向细胞中加入适量细胞染色buffer(或含1%BSA的PBS),用移液枪轻轻吹打细胞重悬

二、细胞计数

用血球计数板或其他仪器对悬液进行计数后,调整细胞浓度约为1 × 107/mL

三、设置实验分组

实验分组

作用

阴性/空白对照

调节仪器电压

单染/单阳对照

调节补偿

同型对照

消除背景染色

FMO对照

确定设门的准确性

生物学对照

实验结果对比

实验组

实验结果

四、封闭Fc受体

封闭Fc受体能减少染色过程中的非特异性染色。

对于小鼠样本,纯化的CD16/CD32单抗能和FcγRⅢ/Ⅱ结合,封闭非特异性染色,使阴性细胞的背景荧光降至未标记细胞的水平。加入0.5~1μg纯的抗小鼠CD16/32单克隆抗体(E-AB-F0997A),室温孵育10分钟。

对于大鼠样本,可使用过量的与荧光抗体相同来源和亚型的纯化Ig或者相同来源血清进行阻断,或者用商业化的Fc受体阻断剂。

对于人样本,纯化的CD16单抗可作为封闭FCR封闭剂。加1 μg纯的抗人CD16单克隆抗体(E-AB-F1236A),室温孵育10 min。

五、细胞染色

1. 按照说明书的推荐用量加入荧光标记抗体,混匀后置于4℃,避光孵育30分钟。

2. 加入细胞染色buffer (或含1%BSA的PBS)重悬细胞,300g离心细胞悬液5分钟,弃掉上清。

3. 加入200μL细胞染色buffer(或含1%BSA的PBS)重悬细胞,用流式细胞仪进行检测和分析

流式实验常见问题及解决方案
流式实验中,有时会遇到样本染色的异常情况,背后的原因复杂,难以排除。Elabscience整理了流式实验染色中可能遇到的异常情况和相应的解决措施,以帮助客户排除实验异常情况,从而得到满意的实验结果。